灵芝多糖对脂多糖诱导的小鼠乳腺炎的保护作用
来源:用户上传
作者:
摘要:灵芝多糖(GLP)是灵芝中主要功能性活性成分,具有增强免疫力、抗氧化、抗炎、抗肿瘤、降血糖和降血脂等功效。采用大肠杆菌内毒素脂多糖(LPS)诱导小鼠乳腺炎,研究灵芝多糖对小鼠乳腺炎的保护作用。试验选取刚分娩的健康雌性小鼠75只,分为空白对照组、LPS组、LPS+2% GLP组、LPS+4% GLP组和LPS+8% GLP组,LPS+2% GLP组、LPS+4% GLP组、LPS+8%GLP组分别灌胃2%、4%、8%的灵芝多糖溶液,空白对照组和LPS组灌胃等量的生理盐水。注射LPS后,测量小鼠体温变化,24 h后取乳腺制作石蜡组织切片,并测定乳腺中的IL-1β、IL-6、TNF-α含量和MPO活性。结果表明,与空白对照组相比,LPS组小鼠体温变化显著,乳腺组织切片出现明显的中性细胞浸润现象,IL-1β、IL-6、TNF-α含量和MPO活性显著上升;LPS+2% GLP组、LPS+4% GLP组、LPS+8%GLP组与LPS组相比,小鼠体温变化有显著改善,18 h后LPS+4% GLP组和LPS+8% GLP组与LPS组差异显著(P<0.05);与LPS组相比,LPS+2% GLP组、LPS+4% GLP组、LPS+8%GLP组小鼠乳腺中性细胞浸润现象明显减轻,LPS+4% GLP组和LPS+8% GLP组的TNF-α、IL-1β含量显著低于LPS组(P<0.05);LPS+4% GLP组和LPS+8% GLP组中IL-6含量显著低于LPS组(P<0.05),LPS+2% GLP组与LPS组差异不显著(P>0.05)。上述结果表明,添加4%、8%灵芝多糖可以减轻由LPS引起的小鼠乳腺炎反应。
关键词:小鼠;灵芝多糖;脂多糖;乳腺炎
中图分类号: S853.74 文献标志码: A 文章编号:1002-1302(2019)23-0197-04
梁学武,教授,主要从事反刍动物营养与生产研究,E-mail:faulxw2000@163.com。 奶牛乳房炎是奶牛场常见的疾病之一,是奶牛健康养殖中极具挑战性的难题。乳腺炎是由病原微生物感染、理化因素刺激等引起的一种炎症反应。其中病原微生物感染是导致乳房炎的主要因素,研究发现,大肠杆菌是引发乳腺炎的主要环境性致病菌。脂多糖(LPS)是大肠杆菌细胞壁外膜主要成分,可通过细胞信号转导系统激活单核巨噬细胞、内皮细胞、上皮细胞等合成和释放多种细胞因子和炎性介质,诱导乳腺炎[1-2]。奶牛乳腺炎是生产中普遍存在的问题,可造成巨大的经济损失。使用奶牛进行试验成本高,且操作复杂,小鼠具有成本低、操作简单、重复性好和易于管理等优点,因此国内外常使用小鼠作为乳腺炎研究的动物模型[3-6]。
临床上多采用抗生素方法治疗乳腺炎,但存在细菌产生耐药性、食品及生态安全风险等诸多弊端,且复发率较高[7]。使用抗生素防治乳腺炎风险逐渐显现,寻找新的无毒无抗、绿色安全的替代制剂越来越迫切[8]。灵芝多糖(GLP)是灵芝中重要的生物活性成分,具有增强动物机体免疫功能,提高中性粒细胞吞噬和杀菌能力的作用,同时具有降低组织损伤程度的功效[9]。本研究通过灌胃给予小鼠灵芝多糖,对小鼠乳房注射脂多糖建立乳房炎模型,通过分析表观症状和病理学表现及相关免疫因子的表达情况,研究灵芝多糖对小鼠乳腺炎的保护作用,为大肠杆菌性奶牛乳腺炎的预防研究提供理论依据。
1 材料和方法
1.1 试验材料
试验材料为120只雌性和30只雄性BALB/c小鼠,6~8周龄,体质量为18~20 g,购自福建中医药研究院。小鼠自由采食和饮水,试验温度为24±1 ℃,相对湿度为40%~80%。
1.2 试剂
灵芝多糖购自吾灵(福州)生物科技有限公司,含量为30.1%;LPS(大肠杆菌055:B5)购自西格玛化学公司。髓过氧化物酶(MPO)活性测定试剂盒购自南京建成生物工程研究所。小鼠TNF-α、IL-6和IL-1β酶联免疫吸附测定(ELISA)试剂盒购自南京建成生物工程研究所。
1.3 小鼠分组及给药方案
试验用小鼠适应性饲养1周后,将雄鼠和雌鼠按1 ∶ 4比例合笼饲养,使雌鼠受孕,密切观察小鼠的生长情况,并在受孕第14天摸胎确认怀孕鼠,纳入后期试验。再选取泌乳为 1~2 d,体表健康,乳区无损伤,质量为40 g左右的初产小鼠75只。将75只小鼠均分为5组,分别为空白对照组、LPS组、LPS+2% GLP组、LPS+4% GLP组、LPS+8% GLP组。LPS+2% GLP组、LPS+4% GLP组和LPS+8% GLP组分别灌胃 0.4 mL 2%、4%、8%的靈芝多糖溶液,空白对照组和LPS组灌胃等量的生理盐水。试验期为17 d。每天08:00灌胃1次,最后1次灌胃1 h后LPS组、LPS+2% GLP组、LPS+4% GLP组和LPS+8% GLP组注射LPS溶液。注射LPS 24 h后脱颈处死小鼠。
1.4 乳腺炎模型
使用10%水合氯醛对小鼠进行腹腔麻醉,麻醉后,在第4对乳头及周围区域用75%乙醇消毒,用无菌手术剪剪除乳头1 mm左右。使用带有32 g针头的微量注射器在第4对乳头处各注射0.2 mg/mL LPS溶液50 μL。
1.5 样品采集与处理
注射LPS后,在0、6、12、18、24 h连续测定各组小鼠体温并记录。试验结束后小鼠禁食、不禁水过夜,乙醚吸入麻醉,称质量,摘眼球采集血液,测定小鼠乳腺MPO活性、TNF-α含量、IL-1β含量和IL-6含量等指标。取小鼠右侧乳腺,经4%多聚甲醛溶液固定后,制作石蜡切片,采用显微镜观察并拍照。
1.6 统计学处理
计量资料使用平均值±标准误差表示,组间比较采用单因素方差分析。
2 结果与分析 2.1 灵芝多糖对小鼠状态及体温的影响
如表1所示,在LPS注射6 h后,LPS组小鼠体温最低,为37.07 ℃,与其他组相比差异显著(P<0.05),LPS+GLP组小鼠体温显著低于空白对照组(P<0.05),LPS+8%组小鼠体温显著高于LPS+2%组(P<0.05),与LPS+4%组差异不显著(P>0.05);在LPS注射后12 h时,LPS组和LPS+GLP组小鼠体温上升,LPS组和LPS+2% GLP组小鼠体温显著高于其他组(P<0.05),LPS+8% GLP组小鼠体温显著高于空白对照组(P<0.05),与GLP+4%组差异不显著(P>0.05)。在LPS注射18、24 h时,各组之间体温差异显著(P<0.05),其中LPS组小鼠体温最高,分别为39.06、39.43 ℃,空白对照组体温最低,分别为37.60、37.63 ℃。
2.2 小鼠乳腺组织的变化
如图1所示,与对照组相比,LPS组的乳腺病理变化最为严重,乳腺腺泡中呈现水肿现象,腺泡结构被严重破坏。LPS+GLP 组乳腺细胞出现中性粒细胞浸润,乳腺的病理变化较轻。组织病理学切片结果表明,灵芝多糖在一定程度上可有效缓解LPS诱发的乳腺炎。
2.3 灵芝多糖对LPS刺激小鼠乳腺组织中MPO活性的影响
如表2所示,LPS组乳腺组织中MPO活性显著高于空白对照组(P<0.05),表明LPS可成功诱导小鼠乳腺炎症。LPS+2% GLP组、LPS+4% GLP组和LPS+8% GLP组乳腺组织中MPO活性显著低于LPS组(P<0.05),表明灵芝多糖可以抑制小鼠乳腺组织中MPO的产生。
2.4 灵芝多糖对LPS刺激小鼠乳腺组织中主要炎性因子的影响
如表3所示,与空白对照组相比,LPS组小鼠乳腺组织中的IL-1β、IL-6和TNF-α含量显著升高(P<0.05),LPS+4% GLP组和LPS+8% GLP组的TNF-α、IL-1β含量显著低于LPS组(P<0.05);LPS+4% GLP组和LPS+8% GLP组中 IL-6含量显著低于LPS组(P<0.05),LPS+2% GLP组IL-6含量与LPS组差异不显著(P>0.05)。
3 讨论与结论
炎症是机体对各种致炎因子及局部损伤所产生的防御性反应。临床上,炎症局部可产生红、肿、热、痛及功能障碍,并伴有不同程度的全身反应。发热是LPS感染的主要反应之一,引起动物发热的致热源一般分为2类:一类是由宿主产生和释放的内源性致热源,另一类则是由微生物产生的外源性致热源[10]。研究发现,IL-1β、IL-6和TNF-α都属于内源性致热源[11]。注射LPS后, 小鼠出现精神萎靡不振、 反应迟钝、活动明显减少的表现,同时乳腺出现红肿现象,这和Roches等在奶牛上的观察结果一致[12]。小鼠感染LPS后,体温呈现出先下降后上升的趋势,总体在24 h时温度达到最高值。刘萍等的试验结果[10-11]与此相同。
脂多糖(LPS)是革兰氏阴性菌细胞壁表面主要的毒力因子,是引起大肠杆菌性乳腺炎的主要原因。当LPS进入乳腺组织中时,会引起大量的中性细胞聚集。中性粒细胞的生理作用直接消灭突破了第1道免疫屏障的入侵抗原,当中性粒细胞检测到抗原或接收到来自组织细胞的信号时,便会大量流入组织[13]。进入乳腺组织中的中性粒细胞在吞噬抗原的同时,也会导致部分乳腺细胞结构出现一定程度的萎缩,甚至遭到破坏[14]。Merriman等研究发现,在乳腺炎发病期间,嗜中性粒细胞几乎占了总体细胞的90%[15]。本试验中,LPS组乳腺组织出现明显的水肿和中性粒细胞浸润现象。
LPS通过Toll样受体4(TLR4)传递信号,经过信号转导的方式进一步激活下游的炎症信号通路NF-κB和MAPKs,产生炎症因子、黏附分子、趋化因子、生长因子和环氧化酶等炎症介质,引发全身炎症反应[16-17]。IL-1β是白细胞介素家族的重要成员之一,可通过诱导机体释放大量炎性细胞因子来引起炎症瀑布反应[18]。TNF-α是一种高度促炎性的细胞因子,可促进内皮细胞的活化以及白细胞向感染部位的募集和活化。据报道,使用大肠杆菌感染乳腺可大大增加血液和牛奶中的TNF-α含量[19]。IL-6由2型辅助(Th2)细胞分泌,可参与先天性和获得性免疫各个方面的调节。Alhussien等使用大肠杆菌刺激乳腺,结果发现,IL-6表达量显著增加[19]。研究发现,使用LPS刺激小鼠,可使机体中的IL-1β、IL-6和TNF-α等细胞炎性因子含量急剧增加[20-21]。在本研究中,LPS组小鼠体温变化明显,乳腺腺泡中呈现水肿和明显的中性细胞浸润现象,与空白对照组相比,乳腺中的IL-1β、IL-6、TNF-α含量和MPO活性呈显著增加,表明LPS成功诱导小鼠乳腺产生炎症反应。
靈芝多糖(GLP)是灵芝中主要生物活性成分,具有抗菌、增强免疫力、抗氧化、抗肿瘤、降血糖和降血脂等功效[22-23]。Skalicka-Wo z′niak等研究发现,灵芝多糖具有抑菌能力,对藤黄微球菌、枯草芽孢杆菌、大肠杆菌、黑曲霉菌和黑根霉菌具有较高的抑制能力[24-25]。GLP对先天性和适应性免疫应答具有很强的免疫调节能力。GLP能够显著抑制TNF-α、IL-1β、IL-6、IL-17A和IL-4的分泌,缓解由葡聚糖硫酸钠(DSS)诱发的结肠炎,维持肠道的稳态[26]。余钰骢等研究发现,灵芝结构多糖水解单体GLSP1和GLSP2可以抑制LPS诱导的巨噬细胞增殖,减弱其吞噬功能,并下调LPS激活的巨噬细胞产生的NO和TNF-α的水平[27]。江国勇等在丙烯酰胺小鼠模型中,使用黑灵芝多糖灌胃小鼠,结果发现,黑灵芝多糖可显著降低小鼠肝脏中的IL-1β和IL-10水平,改善丙烯酰胺造成的肝脏损伤[28]。在本研究中,灵芝多糖通过抑制乳腺组织中IL-1β、IL-6和TNF-α的产生,显示出抗炎作用。病理组织学切片观察结果表明,灵芝多糖可减轻大肠杆菌内毒素引起的病理损伤。此外,在灵芝多糖浓度为2%、4%和8%时,乳腺中的MPO活性水平显著降低。这些结果表明,灵芝多糖可缓解由大肠杆菌感染引起的乳腺炎症反应。 综上所述,灵芝多糖可以通过降低乳腺中 TNF-α、IL-1β、IL-6含量和MPO活性,缓解小鼠乳腺炎症,特别是添加量在4%和8%时效果最佳。试验结果表明,灵芝多糖有望用作饲料添加剂,预防动物乳腺炎的发生。
参考文献:
[1]解颖颖. 芹菜素、针刺对LPS诱导的SD大鼠乳腺炎的抗炎效果及其机制研究[D]. 哈尔滨:东北农业大学,2017.
[2]黄永周,李 漪,丛竹军. 栀子苷对乳腺炎动物模型IL-6、TNF-α和IL-1β表达的影响[J]. 中国比较医学杂志,2018,28(11):95-99.
[3]Chen X X,Zheng X T,Zhang M,et al. Nuciferine alleviates LPS-induced mastitis in mice via suppressing the TLR4-NF-B signaling pathway[J]. Inflammation Research,2018,67(11/12):903-911.
[4]Geng H,Zou W,Zhang M,et al. Evaluation of phage therapy in the treatment of Staphylococcus aureus-induced mastitis in mice[J]. Folia Microbiologica,2019(3):1-13.
[5]Guo W J,Liu B R,Hu G Q,et al. Vanillin protects the blood-milk barrier and inhibits the inflammatory response in LPS-induced mastitis in mice[J]. Toxicology and Applied Pharmacology,2019,365:9-18.
[6]Kan X C,Liu B R,Guo W J,et al. Myricetin relieves LPS-induced mastitis by inhibiting inflammatory response and repairing the blood-milk barrier[J]. Journal of Cellular Physiology,2019,234(9):16252-16262.
[7]徐 進,敖日格乐,贾知锋,等. 姜黄素对乳腺炎模型小鼠细胞免疫的影响[J]. 中国兽医学报,2019,39(4):774-781.
[8]姚国强,张和平. 乳酸菌与牛乳腺炎的相关性研究及应用[J]. 中国兽医学报,2018,38(11):2227-2233.
[9]Shi M,Zhjang Z Y,Yang Y N. Antioxidant and immunoregulatory activity of Ganoderma lucidum polysaccharide(GLP)[J]. Carbohydrate Polymers,2013,95(1):200-206.
[10]刘 萍. 甘草甜素对人工诱导小鼠乳腺炎的免疫保护效应研究[D]. 保定:河北农业大学,2007.
[11]宁兰婷. 连续低剂量灌注脂多糖对泌乳奶牛炎性反应、乳产量以及乳品质的影响[D]. 重庆:西南大学,2016.
[12]Roches A D B D,Lussert A,Faure M,et al. Dairy cows under experimentally-induced Escherichia coli mastitis show negative emotional states assessed through qualitative behaviour assessment[J]. Applied Animal Behaviour Science,2018:S1736238773.
[13]杨 帆. 金黄色葡萄球菌诱导奶牛中性粒细胞凋亡的基因表达研究[D]. 武汉:华中农业大学,2013.
[14]朱乐乐,厉成敏,李 莲,等. 乳头灌注脂多糖对奶牛乳腺组织及机体免疫的影响[J]. 畜牧与兽医,2019,51(1):93-98.
[15]Merriman K E,Powell J L,Santos J E. Intramammary 25-hydroxyvitamin D-3 treatment modulates innate immune responses to endotoxin-induced mastitis[J]. Journal of Dairy Science,2018,101(8):7593-7607.
[16]Hu G,Hong D,Zhang T,et al. Cynatratoside-C from Cynanchum atratum displays anti-inflammatory effect via suppressing TLR4 mediated NF-κB and MAPK signaling pathways in LPS-induced mastitis in mice[J]. Chemico-Biological Interactions,2018,279:187-195.
[17]阚兴池. 杨梅素对LPS诱导的小鼠乳腺炎的影响及其机制[D]. 长春:吉林大学,2019.
[18]龚玉芳,姜 斌,刘 峰. 乳腺癌患者血清趋化因子配体8、白细胞介素1-β、sCD200的表达水平及临床意义[J]. 中国妇幼保健,2019,34(5):1148-1151. [19]Alhussien M N,Dang A K. Pathogen-dependent modulation of milk neutrophils competence,plasma inflammatory cytokines and milk quality during intramammary infection of Sahiwal (Bos indices) cows[J]. Microbial Pathogenesis,2018,121:131-138.
[20]Li F F,Huang D F,Nie S P,et al. Polysaccharide from the seeds of Plantago asiatica L. protect against lipopolysaccharide-induced liver injury[J]. Journal of Medicinal Food,2019,22(10):1058-1066.
[21]Hu X Y,He Z Q,Jiang P,et al. Neutralization of interleukin-17a attenuates lipopolysaccharide-induced mastitis by inhibiting neutrophil infiltration and the inflammatory response[J]. Journal of Interferon and Cytokine Research,2019,39(9):577-584.
[22]楊美璐,李宇敏,张 英,等. 灵芝多糖的生物活性及其在动物生产中的应用研究[J]. 饲料研究,2018(3):55-58.
[23]Fu Y,Shi L,Ding K. Structure elucidation and anti-tumor activity in vivo of a polysaccharide from spores of Ganoderma lucidum (Fr.) klarst[J]. International journal of biological macromolecules,2019,141:693-699.
[24]Skalicka-Wo z'niak K,Szypowski J,o s' R A,et al. Evaluation of polysaccharides content in fruit bodies and their antimicrobial activity of four Ganoderma lucidum (W Curt.:Fr.) P. Karst. strains cultivated on different wood type substrates[J]. Acta Societatis Botanicorum Poloniae,2012,81(1):17-21.
[25]Bai D,Chang N T,Li D H,et al. Antiblastic activitiy of Ganoderma lucidum polysaccharides[J]. Acta Agric Boreali Sin,2008,23:282-285.
[26]Wei B,Zhang R,Zhai J,et al. Suppression of Th17 cell response in the alleviation of dextran sulfate sodium-induced colitis by Ganoderma lucidum polysaccharides[J]. Journal of Immunology Research,2018(5):6265-6274.
[27]余钰骢,姚菊明,应铁进. 灵芝结构多糖水解物促进细胞免疫的功能研究[J]. 中国食品学报,2019,19(6):46-53.
[28]江国勇,雷艾彤,杨 莹,等. 黑灵芝多糖对丙烯酰胺致大鼠肝脏氧化损伤的保护作用[J/OL]. 食品科学,2019:1-11 [2019-10-02]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/11.2206.TS.20190917.1726.105.html.
收稿日期:2019-10-10
基金项目:福建省教育厅中青年教师教育科研项目(编号:JAT160145);福建省教育厅菌草生态产业协同创新中心项目(编号:K80ND800213);福建农林大学科技发展资金(编号:KF2015094)。
作者简介:苗 景(1994—),男,河南南阳人,硕士,从事反刍动物营养研究。E-mail:hnmiaojing@126.com。
通信作者:林仕欣,博士,助理研究员,主要从事反刍动物营养学研究,E-mail:linshixin@fafu.edu.cn;
转载注明来源:https://www.xzbu.com/1/view-15121741.htm