类风湿关节炎动物模型研究进展
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作者:任妮娜 凌益 姚血明 徐晖 曾苹 马武开
【摘 要】 类风湿关节炎是一种病因病机未明的免疫系统疾病,具有致残率高、易复发的特点,严重影响患者工作和生活。明确类风湿关节炎病因病机、研发新的具有针对性的治疗药物已成为当今风湿病的热点话题,也是亟待解决的难题。类风湿关节炎动物模型在其中扮演了不可或缺的角色。现就目前常用的类风湿关节炎动物模型进行论述,以期为类风湿关节炎的动物研究提供另一视角。
【关键词】 关节炎,类风湿;动物模型;综述
类风湿关节炎(rheumatoid arthritis,RA)是一种临床常见的自身免疫性疾病,其病理表现为滑膜炎、血管翳形成和血管炎。流行病学调查显示,RA的全球发病率为0.5%~1%,中国大陆地区发病率为0.42%,总患病人群约500万[1]。RA的发病机制尚不完全清楚,实验动物模型仍是RA疾病研究的重要载体[2]。虽然只能在一定程度上模拟人类RA,但理想的动物模型对于RA发病机制的研究、新药的研发及有效防治方案的制定等方面有着重要意义。本文就目前公认常用的RA模型作一综述,希望能够在总结前人经验的基础上得到新的启发,为进一步研究RA提供新的视角。
1 佐剂性关节炎(AA)模型
AA模型分为完全佐剂(CFA)和不完全佐剂(IFA)[3],可选用大鼠、小鼠、家兔等啮齿动物[4]。CFA是用高压灭菌的液体石蜡与无水羊毛脂按2∶1或6∶4比例合成的1 mL混合液,加入80 ℃灭活减毒卡介苗或干燥结核死菌10 mg充分乳化混匀,制成10 g·L-1的CFA于大、小鼠后足跖部或尾根部皮内注射。通常造模后第2天出现早期关节炎表现,持续2~3 d后逐渐减轻,7~8 d再度肿胀,继发病变于致炎后第10天左右出现,表现为继发侧(对侧)关节进行性肿胀[5-8]。家兔造模方法则采用单侧足跖、背部皮下注射CFA 0.4 mL,同时注射肩胛部任意4点,每点0.2 mL,造模7 d后背部或足跖背部加强免疫[9-10]。
AA是一種经典的RA造模方法,被广泛用于防治RA的实验研究中。AA模型在发病症状(关节肿胀及软骨破坏等)、病理表现(增生性滑膜炎及血管翳、炎性浸润和肉芽肿形成)及关节外症状(侵犯脾脏、肝脏、骨髓、皮肤和眼)等方面接近人类RA,其不足是无慢性病理过程及自身抗体、病变有自限性(造模AA大鼠4个月炎症自行消退),与人类RA不符[11-15]。
2 胶原诱导性关节炎(CIA)模型
TRENTHAM等[16]于1977年创立了CIA模型,提出50%的RA患者有自身抗CⅡ抗体,并观察到用异同源CⅡ抗原可诱导大鼠出现破坏性多关节炎,是目前公认的最佳RA动物模型。一般选择啮齿类及灵长类动物为造模对象[16-17],其中大鼠作为载体运用最多,有学者认为Wistar和SD大鼠发病率和发病程度明显高于其他品种[18]。CIA大鼠的造模方法是将牛CⅡ溶于0.5 mol·L-1醋酸,冰浴下滴加等体积IFA,制成终浓度为2 g·L-1乳剂,于大鼠背部、尾根部多点及单侧足垫皮内注射致敏诱发免疫反应[19]。笔者课题组按此方法采用Wistar大鼠建立CIA大鼠模型,成功率达90%[20-21]。还有研究应用牛CⅡ食物抗原灌胃成功诱发并建立CIA模型,为CIA模型提供了一种新的复制方法[22]。RA被认为是一种依赖Th1的疾病,然而,随着白细胞介素-17(IL-17)基因和Th17细胞的描述和表征,越来越多的证据表明CD4+T细胞是RA发展的关键角色,CIA的骨侵蚀是由IL-17基因和Th17细胞通过RANKL调节介导的[23-25]。
CIA模型在临床症状、病理学改变、免疫反应等方面都与人类RA特征高度相似,如对称关节受累、肢体远端关节侵犯、滑膜增生炎症、血管翳形成及软骨和骨的破坏。然而,CIA模型与人类RA也存在较为显著的差异,CIA模型中虽存在自身抗体,但无类风湿因子(RF)及抗核抗体,也无RA皮下结节、浆膜炎、血管炎等关节外表现;其次,该模型无复发情况和病情的波动,动物模型发病时间、发病率及给药剂量方面均无统一标准[26-27]。
3 卵清蛋白(OVA)诱导的关节炎模型
OVA诱导的关节炎模型是1962年DUMONDE与GLYNN以家兔为实验载体,首先建立的一种可持续数月的迟发性变态反应性RA动物模型,其炎症反应与抗原的颗粒性、不溶性等因素相关[28],成模率可达100%[29-30]。该模型是通过反复皮下注射OVA,使动物体内产生特异性抗OVA抗体,随后在关节腔内再次注射抗原,刺激机体的补体系统和细胞免疫,形成抗原-抗体-补体C3复合物沉积于关节软骨和滑膜,使滑膜炎持续存在造成滑膜增生、血管翳形成,进而出现软骨及骨破坏[31]。有研究表明,OVA可特异性刺激家兔淋巴细胞,使T、B淋巴细胞参与关节炎的进展[32]。
OVA模型表现的多关节病变与人RA的主要特征非常相似,包括滑膜细胞的肥大和增生、淋巴细胞聚集为特征的滑膜慢性炎症、关节软骨和邻近骨侵蚀的血管炎、浆细胞的弥漫性浸润、自身抗体产生、干骺端骨膜下的新骨形成。OVA引起的淋巴细胞集聚现象,可较好地模拟免疫性疾病的微环境,不需近交系动物,适合如兔、羊等较大病变关节的研究,其病理过程与人RA相似,还可见滑膜组织内Russell小体,但其免疫学指标(如抗体的表达等)与人体相比有一定的差异[32-33]。
4 降植烷诱导的关节炎(PIA)模型
降植烷(2,6,10,14-四甲基十五烷)是一种常用的致炎剂。PIA模型常选用BALB/c、DBA/1小鼠及DA、Lewis、E3大鼠作为实验动物,SD、Wistar等远交系大鼠也可供选择[34]。PIA小鼠模型的制备方法是在小鼠尾根部注射降植烷
500 μL,7周后注射等量降植烷加强免疫,首次注射后10周左右即可观察到关节肿胀。PIA大鼠模型制备方法为于DA大鼠尾根部皮内一次性注射降植烷300 μL,注射1~2周可见四肢掌指、指间及踝关节红肿,动物行走障碍,关节活动度下降,第3~4周达高峰,发病率可达100%,急性炎症消退后病程仍迁延数月,反复发作,慢性进展[35]。 该模型是由T细胞和MHC-Ⅱ类分子调控的慢性、联合特异性关节炎[36],主要依赖于CD4+T淋巴细胞活化致炎[37],主要通过免疫系统的非特异性刺激引起自身反应性T淋巴细胞活化致关节急性炎症,随即进入慢性进展和反复发作阶段,表现为一个较长的慢性迁延期[38]。PIA模型重复性好,与人RA病变关节组织病理改变相似:滑膜增生、软骨破坏、骨缺损、炎症细胞浸润(以中性粒细胞和单核细胞为主)和血管翳形成。无论大鼠还是小鼠PIA模型,RF均阳性,包括免疫球蛋白G(IgG)和免疫球蛋白M(IgM)两种类型。小鼠PIA可伴多种自身抗体升高,如热休克蛋白65和Ⅰ、Ⅱ型胶原抗体等,由于自身抗体的产生,PIA也被用作系统性红斑狼疮的模型。与PIA小鼠模型不同,PIA大鼠关节侵蚀伴随着软骨寡聚基质蛋白水平显著升高,但未发现系统性异常,炎症仅限于关节[36,38]。
5 自发型转基因关节炎模型
除诱导型关节炎模型外,RA動物模型还包括自发型转基因关节炎动物模型。此种大多是小鼠模型,一种是基因缺失(或基因敲除),另一种是某个特定基因的转基因型。这些模型提供了关于基因在炎症过程中所起作用的相关信息。
5.1 肿瘤坏死因子-α(TNF-α)转基因模型 TNF-α转基因模型于1991年由KOLLIAS等建立,通过修饰C57BL/6小鼠3'端的UTR区域,使其表达高水平TNF-α,致自发性关节炎发生[39]。TNF-α转基因模型小鼠3~4周时出现自发性慢性炎症,可见关节炎、滑膜增生及炎症细胞浸润等,小鼠在10周龄时发展成RA,可见与人RA特征相似的表现,如具有慢性进行性的对称性关节炎、血管翳形成、关节软骨及骨破坏,该模型成模率100%[40]。KONTOYIANNIS等[41]还发现该模型存在类似克罗恩病的炎症性肠病。此外,KOLLIAS等[42]将TNF-α转基因小鼠与无T细胞或B细胞的rag-1基因敲除小鼠杂交,发现也可发生糜烂性关节炎。在这些研究的基础上,目前已有多种TNF-α抑制剂出现,如依那西普(可溶性TNF R2-IgG1融合蛋白)、英夫利昔单抗(抗TNF-α的嵌合单克隆抗体)、阿达木单抗(首个抗TNF的人源化单克隆抗体)等[43],对于RA的药物治疗向着生物制剂(bDMARDs)发展有着不可替代的价值。
5.2 K/BxN转基因模型 K/BxN转基因模型小鼠是KRN T细胞受体转基因小鼠与C57BL/6x NOD小鼠杂交的后代,是BUTTGEREIT等[44]1996年首次建立的自发性关节炎小鼠模型。该模型小鼠3~4周即可见关节炎急性发作,表现为关节肿胀、滑膜及血管增生、血管翳形成、软骨及骨破坏等,缓慢进行性发展为关节损伤、关节畸形(远端关节为主);较为特别的是该模型血清中存在大量自身抗体[45]。目前认为该模型主要发病机制是T、B细胞特异性识别自身葡萄糖-6-磷酸异构酶刺激补体活化和肥大细胞脱颗粒,并产生相应抗体,通过TNF-α、IL-1介导致炎[37]。但RA患者抗自身葡萄糖-6-磷酸异构酶抗体相关说法尚有争议[46]。K/BxN转基因模型RA疾病相似度高、发病率高、重复性好,对于RA发病机制的相关研究具有重要意义。
5.3 IL-1Ra-/-模型 该模型是在BALB/c小鼠(但不是C57BL/6小鼠)背景下产生的,属于基因敲除模型,可自发地发展为一种由滑膜和关节周围炎症组成的多关节病变。一般在5~8周时发病,可见炎性浸润、血管翳形成和关节侵蚀等关节炎表现,IL-6、TNF-α等炎症因子表达水平的升高,及RF、抗CⅡ、IgG和抗ds-DNA抗体的产生(不包含IgM型RF),其发病机制主要依赖T细胞作用。这种转基因模型目前正被用于小鼠基因组芯片分析,以研究IL-1b在风湿病中的作用。此外,已知IL-1b可诱导IL-1a54、IL-6和环氧合酶-2(Cox-2)的表达,使其成为研究Cox-2抑制剂的重要工具[26,36,47-49]。
6 其 他
除上述RA模型外,油诱导的关节炎、Mtb诱导的关节炎、胶原抗体诱导的关节炎、阿夫立定诱导的关节炎、蛋白多糖诱导的关节炎、链球菌细胞壁诱导的关节炎、软骨寡聚基质蛋白诱导的关节炎及SKG转基因小鼠、人DR4-CD4小鼠、人/SCID嵌合小鼠等RA动物模型,都为RA的相关研究做出了一定程度的贡献,但目前运用的研究报道不多,仍有待深入研究[37,50-52]。
7 小结与展望
综上,AA模型是经典的RA造模方法,造模方法简单易行、成模率高,且经济适用,除关节表现外还可见关节外表现,免疫以T细胞活化及其亚群之间的平衡紊乱为主,T细胞及其亚群相关机制研究且需考虑经济性,选择该模型更为适宜。CIA还可诱导易感菌株的啮齿动物,主要是DBA/1小鼠,C57BL/6小鼠有限制。通常在DBA/1小鼠初次致敏后21~25 d出现,最突出的是四肢多关节炎,以滑膜炎性浸润、软骨和骨侵蚀以及类似人RA的滑膜增生、对自身和胶原蛋白耐受性的破坏和自身抗体的产生为特征;约第35天达到高峰,此后进入缓解期。CIA模型不论是大鼠或小鼠,病变都具有自限性、局限性,在发病率方面有相当大的个体差异。由于CIA模型的自限性,实验研究时应于关节炎消退前进行给药等干预措施,因该模型与人RA特征最为相似,故CIA仍是目前公认的RA最佳动物模型。
由于一些特殊的实验(如进行药品注射、细胞移植治疗等)需要与人类亲缘关系较近或体型较大的动物,而小鼠等动物体积小,且形态学上与人类相差较远,OVA诱导的关节炎模型可以满足该要求。应注意的是,诱导性关节炎模型中,CFA模型、CIA模型及OVA诱导的关节炎模型的成功,关键在于乳剂的乳化程度是否完全,以乳剂滴于冰水中完全不扩散为检测乳剂是否合格的指标,并应于制备后尽早使用,避免影响成模率[32]。PIA动物模型成模率高,重复性好,使用方便,大、小鼠模型RF-IgG、RF-IgM均阳性,PIA小鼠可伴多种自身抗体升高,大鼠软骨寡聚基质蛋白高表达,缓慢进行性加重的关节炎,且病程迁延。故PIA动物模型较适用于RA慢性病程相关或自身抗体相关的研究。转基因关节炎小鼠模型主要表现为自发的慢性进行性多发关节炎,一般发病年龄为3~4周龄,包括TNF-α转基因模型、K/BxN转基因模型、IL-1Ra-/-模型等,对改善病情抗风湿药物研发起主导作用。对于分子生物层面上的RA病因病机及治疗药物的研究可优先考虑转基因型动物模型。 不难发现,目前并无相对完备的RA动物实验模型。RA动物模型均仅体现了人RA的某个或某些特征,对于发病诱因或高危因素如感染、遗传、环境等,以及一些人RA症状及多系统病变如晨僵、关节痛及压痛、发热、RA所致肺间质病变等不适很难完全体现出来,且实验动物模型的制备及评价标准等均无统一、规范的实施标准,因此,RA动物模型仍需完善。探寻一种较全面反映RA特点的动物模型仍是RA科研学者的一大重任。
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收稿日期:2019-05-14;修回日期:2019-06-20
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