三叶青多糖提取工艺优化及单糖组成分析
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摘 要 为优化三叶青多糖的提取工艺,并分析其单糖组成,通过正交试验设计方法优选三叶青多糖的最佳提取工艺,同时,采用柱前衍生化-高效液相色谱法来测定单糖组成。结果表明:三叶青多糖的最佳提取工艺为料液体积比1∶25,提取2次,每次2.5 h,醇沉浓度70%。该方法对多糖提取率为7.40%;柱前衍生化-高效液相色谱法分析得三叶青多糖主要由甘露糖、鼠李糖、半乳糖醛酸、葡萄糖、岩藻糖、半乳糖、阿拉伯糖等单糖组成。本实验方法简单可行。
关键词 三叶青多糖;提取工艺;单糖;柱前衍生化
中图分类号:Q599 文献标志码:A DOI:10.19415/j.cnki.1673-890x.2020.1.002
葡萄科崖爬藤属植物三叶崖爬藤(Tetrastigma hemsleyanum Diels et Gilg),别名三叶青、金丝吊葫芦、丝线吊金钟、三叶扁藤等,分布于浙江、福建、江西等地[1-2],是新“浙八味”之一[3]。三叶青性凉、无毒、味甘微苦,有清热解毒、活血止痛、祛风、化痰等功效[4],常用于治疗高热惊厥、肺炎、肝炎、风湿、咽痛、瘰疬、痈疔疮疖等[5-6]。三叶青的化学成分有黄酮类、萜类、多糖类、酚类、氨基酸、甾体类、油脂类等[7]。目前,关于三叶青多糖的研究较少[8],本文旨在对三叶青多糖提取工艺优化及其单糖组成进行分析,为三叶青多糖的研究和开发利用提供一定的实验基础及理论依据。
1 材料与方法
1.1 材料
AE240电子天平(瑞士METTLER公司),HH-S数控恒水浴锅(金华市文华科教实验仪器厂),低温旋转蒸发一体机(日本YAMATO公司),SHIMADZU UV-2450 紫外分光光度仪(日本SHIMADZU公司),VD115真空干燥器(德国BINDER公司),515型HPLC系统(美国Waters公司),LC 20vp HPLC系统(日本SHIMADZU公司)。
三叶青药材(杭州华东中药饮片有限公司,批号:151119、151212、151220);无水葡萄糖标准对照品(KAYON公司,批号:20111203);甘露糖(Man)、鼠李糖(Rham)、半乳糖醛酸(GalUA)、葡萄糖醛酸(GlcUA)、氨基葡萄糖(GlcN)、氨基半乳糖(GalN)、葡萄糖(Glc)、阿拉伯糖(Ara)、岩藻糖(Fuc)和半乳糖(Gal),共10种单糖标准品(Sigma-Aldrich 公司);乙腈(色谱纯,德国MERCK公司);其他试剂均为国产分析纯。
1.2 方法
1.2.1 三叶青多糖含量测定
1.2.1.1供试品溶液的制备
取三叶青药材饮片适量,打粉,过三号筛,精密称取100 g粉末,加30倍蒸馏水,回流提取3次,每次1 h,收集3次滤液并合并,浓缩至2 L,然后用Sevage法(样品溶液、二氯甲烷、正丁醇的体积比为25∶4∶1)脱蛋白,加无水乙醇,醇沉过夜,干燥沉淀物,得三叶青粗多糖,粗多糖加水溶解,定容至1 L,得供试品溶液。
1.2.1.2对照品溶液的制备
精密称取105 ℃干燥至恒重的无水葡萄糖适量,精密称定,加水制成0.246 mg·mL-1的对照品溶液。
1.2.1.3检测波长的选择
精密吸取供试品溶液 1 mL、对照品溶液0.5 mL,置于具塞比色管中,加蒸馏水至2 mL,精密加入1 mL的5%苯酚溶液,摇匀,准确移取浓H2SO4 5 mL,迅速摇匀后,放置5 min,置沸水浴中加热30 min,取出,放入冰水浴中冷却20 min,在400~600 nm范围对其进行扫描,选择最大吸收波长作为检测波长[9]。
1.2.1.4标准曲线的绘制
精密吸取葡萄糖标准液250、500、750、1 000、1 250、1 500 ?L于具塞试管中,分别加蒸馏水定容至2 mL,得系列对照品溶液,精密加入1 mL 5%苯酚溶液及5 mL的浓H2SO4溶液,80 ℃水浴提取,取出后放入冰水浴中,冷却20 min,以蒸馏水作为空白,用分光光度计在490 nm处测定吸光度,以浓度为横坐标(C),吸光度为纵坐标(A),绘制标准曲线。
1.2.1.5含量测定
精密吸取2 mL供试品溶液,按“1.2.1.4”项下操作测定吸光度,计算三叶青多糖含量[10]。
1.2.2 方法学考察
1.2.2.1精密度實验
精密吸取供试品溶液2 mL,按“1.2.1.4”项下操作测定吸光度,连续测定5次,计算RSD值。
1.2.2.2稳定性试验
精密吸取2 mL供试品溶液,按“1.2.1.4”项下操作,分别在30、60、90、120、150、180 min测定吸光度。计算RSD值。
1.2.2.3重复性试验
精密称取6份干燥后的三叶青样品,分别提取,每份供试品溶液取2 mL,置于试管中,按“1.2.1.4”项下操作,依法测定吸光度,计算RSD值[11]。
1.2.2.4加样回收试验
精密吸取已知浓度的同一供试品溶液1 mL,共9份,分别加入适量多糖标准品溶液1 mL,按“1.2.1.4”项下操作,依法测定吸光度,计算其平均加样回收率和RSD值[12]。
1.2.3 三叶青多糖提取工艺优化(单因素试验)
1.2.3.1提取时间
固定提取温度100 ℃,料液比(均为体积比,下同)1∶30,醇沉浓度90%,改变提取时间(0.5 h、1.0 h、1.5 h、2.0 h、2.5 h),提取2次,提取三叶青多糖,计算三叶青多糖的提取率。 1.2.3.2提取次数
固定提取温度100 ℃,提取时间为2 h,料液比1∶30,醇沉浓度90%,改变提取次数(1次、2次、3次、4次、5次)提取三叶青多糖,计算三叶青多糖的提取率。
1.2.3.3料液比
固定提取温度100 ℃、提取时间为2 h,提取次数2次,醇沉浓度90%,改变料液比(1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30)提取三叶青多糖,计算三叶青多糖的提取率。
1.2.3.4醇沉浓度
固定提取温度100 ℃、提取时间为2 h,提取次数2次,料液比1∶30,改变醇沉浓度(60%、70%、80%、90%、95%)提取三叶青多糖,计算三叶青多糖的提取率。
1.2.4 三叶青多糖提取条件优化
在单因素试验基础上,以提取时间(A)、提取次数(B)、料液比(C)和醇沉浓度(D)为考察因素,设计L9(34)正交试验。
1.2.5 三叶青多糖的单糖组成测定
1.2.5.1混合单糖对照品的衍生化[13-14]
分别精密称取各单糖对照品4 mg置10 mL量瓶中,加水溶解混匀,定容得0.4 mg·mL-1混合单糖对照品储备液。精密量取稀释后的混合单糖对照品溶液100 μL,于具塞试管中,依次加入0.5 mol ·L-1 PMP甲醇溶液100 μL和 0.3 mol ·L-1的NaOH溶液100 μL,混匀,70 ℃水浴反应30 min,取出冷却至室温,加入0.3 mol ·L-1的HCl 100 μL进行中和,再加入1 mL氯仿萃取,充分震荡,弃氯仿层,重复3次,取上清液定容至1 mL,0.45 μm微孔滤膜滤过,10 μL进样分析。
1.2.5.2供试品的衍生化[15]
精密称取三叶青多糖4 mg置于2 mL量瓶中,溶解并定容。精密吸取100 μL置于安瓿瓶中,加入1 mol ·L-1 TFA 2 mL,100 ℃水解8 h,冷却至室温,以1 mol ·L-1 NaOH溶液调pH值为7,以纯化水稀释并定容至5 mL,过滤,取续滤液,按“1.2.5.1”项下的方法进行衍生化处理。
1.2.5.3色谱条件
色谱柱ZORBAX SB-C18 (250 mm ×4.6 mm,5 μm);流动相0.02 mol/L乙酸铵-乙腈(84∶16) ;流速0.5 mL·min-1;柱温30 ℃;檢测波长245 nm;进样量10 μL。
2 结果与分析
2.1 三叶青多糖含量测定
2.1.1 检测波长的选择
供试品溶液与对照品溶液均在490 nm处有最大吸收,故选择检测波长为490 nm。
2.1.2 标准曲线
以浓度为横坐标(C),吸光度为纵坐标(A),绘制标准曲线。得回归方程:y=9.268 3x+0.001 3,r=0.999 3。结果表明,葡萄糖对照品在0.020 5~0.123 mg·mL-1浓度范围内呈较好的线性关系。
2.2 方法学考察
精密度实验测定结果得吸光度均值为0.385,RSD=0.50%。表明该方法精密度良好,符合含量测定要求。稳定性试验测定结果得RSD=0.49%,表明在显色后180 min内稳定性良好。重复性试验测定结果得RSD=0.85%,表明重复性良好。加样回收试验平均回收率为99.8%,RSD=2.97%,表明方法的准确性良好,方法可行。结果列于表1。
2.3 三叶青多糖提取工艺优化
2.3.1 单因素试验
提取时间2 h时,多糖的提取率达到最高;提取次数为3次时,多糖的提取率达到最高;料液比为1∶20时,多糖的提取率达到最高;醇沉浓度为80%时,多糖的提取率达到最高。
2.3.2 提取条件优化
在单因素试验基础上,设计L9(34)正交试验(见表2),试验结果见表3,方差分析结果为差异均不显著。由结果可知,各因素影响大小依次为:料液比>提取时间>提取次数>醇沉浓度;三叶青多糖的最佳提取工艺为A3B1C3D1,即提取时间为2.5 h,提取次数为2次,料液体积比为1∶25,醇沉浓度为70%。
采用最佳提取工艺条件进行验证试验,得多糖提取率为7.40%。
2.4 三叶青多糖的单糖组成
单糖标准品溶液色谱图见图1,三叶青多糖水解液单糖色谱图见图2。分析结果显示,三叶青多糖由甘露糖(Man)、鼠李糖(Rham)、半乳糖醛酸(GalUA)、葡萄糖醛酸(GlcUA)、氨基葡萄糖(GlcN)、氨基半乳糖(GalN)、葡萄糖(Glc)、阿拉伯糖(Ara)、岩藻糖(Fuc)、半乳糖(Gal)组成。
3 小结与讨论
多糖的提取大多用水浴提取法,包括酸提取法、碱提取法[16],此外还有超声波提取法[17],微波提取法[18]、酶解法等[19]。水浴提取法是多糖提取的最常用方法,该方法反应条件温和,对多糖的结构组成及生理活性破坏较小。本实验采用水提醇沉法提取三叶青多糖,并通过正交试验优选出最佳提取工艺。饶君凤等采用离子色谱法测定三叶青块根和叶中多糖的单糖组成,测得有岩藻糖、鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、葡萄糖、半乳糖6种单糖[20]。本实验通过柱前衍生化HPLC法对三叶青多糖的单糖组成加以分析,结果表明,除了上述6种单糖外还有半乳糖醛酸、葡萄糖醛酸、氨基葡萄糖、氨基半乳糖这4种单糖,对文献报道进行了补充。
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(责任编辑:丁志祥)
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